Résumé de l'analyse DE RNA-Seq 2

RNA-Seq avec Bioconductor dans R

Mary Piper

Bioinformatics Consultant and Trainer

Flux DESeq – normalisation

workflow-normalization

dds <- estimateSizeFactors(dds)
normalized_counts <- counts(dds, normalized=TRUE)
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Analyses de groupement non supervisées : transformation log

workflow-clustering

# Log transformation of normalized counts
vsd <- vst(dds, blind=TRUE)
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Analyses de groupement non supervisées

heatmap

RNA-Seq avec Bioconductor dans R

Analyses de groupement non supervisées – carte thermique

vsd %>%
    assay() %>% # Extract the vst matrix from the object
    cor() %>%   # Compute pairwise correlation values
    pheatmap(annotation = metadata[ , c("column_name1", "column_name2])

heatmap

RNA-Seq avec Bioconductor dans R

Analyses de groupement non supervisées – ACP

# PCA
plotPCA(vsd, intgroup="condition")

pca

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Exécuter l'analyse DE

DESeq2 workflow - model

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Exécuter l'analyse DE

# Create DESeq object
dds <- DESeqDataSetFromMatrix(countData = rawcounts,
                              colData = metadata,
                              design = ~ source_of_variation + condition)

# Run analysis
dds <- DESeq(dds)
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Flux DESeq2 – modèle

# Plot dispersion estimates
plotDispEsts(dds)

dispersion

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Flux DESeq2 – contrastes et réduction LFC

DESeq2 workflow - LFC shrinkage

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Flux DESeq2 – contrastes et réduction LFC

# Extract results for comparison of interest
res <- results(dds, 
                contrast = c("condition_factor", "level_to_compare", 
                "base_level"), 
                alpha = 0.05)

# Shrink the log2 foldchanges
res <- lfcShrink(dds, 
                contrast = c("condition_factor", "level_to_compare", 
                "base_level"), 
                res = res)
RNA-Seq avec Bioconductor dans R

Flux DESeq2 – réduction LFC

# Extract all results as a data frame
res_all <- data.frame(res) %>% 
        rownames_to_column(var = "ensgene") 
# Add gene annotations
res_all <- left_join(x = res_all, 
                    y = grcm38[, c("ensgene", "symbol", "description")], 
                    by = "ensgene") 
res_all <- arrange(res_all, padj)

annotations

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Flux DESeq2 – exploration des résultats

DESeq2 workflow - results exploration

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Flux DESeq2 – exploration des résultats

# Identify significant genes
res_sig <- subset(res_all, padj < 0.05)

sig results

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Passons à la pratique !

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